大肠杆菌感受态细胞实验流程(实验介绍,实验所需试剂,实验步骤,实验注意事项)
Release Time:2020-07-24一、大肠杆菌感受态细胞实验简介:
二、大肠杆菌感受态细胞实验所需试剂:
LB液体培养基、、CaCl2溶液、甘油、2ml离心管、1.5ml离心管
三、大肠杆菌感受态细胞实验步骤:
1)制备大肠杆菌感受态细胞
(1)从新激活的大肠杆菌DH5α细菌平板中挑出一个菌落,将其注入3?5ml的LB液体培养基中,在37°C条件下摇动培养约12小时,直到对数生长期。将细菌悬浮液以1:100?1:50的比例放入100ml LB液体培养基中,在37℃条件下摇动并扩展,当培养液开始出现浑浊时,每20?30分钟测量OD600nm直到OD600nm≤0.5停止训练即可。
(2)每组取3份2ml的培养物,转移至2ml离心管中后,在冰上冷却大约20-30min,并以条件下4℃以4000r / min离心10min(此后,所有操作均在冰上进行,速度要快而稳定);
(3)倒入上清培养基中,用1ml冰冷的0.1mol / L CaCl2溶液轻轻悬浮细胞,并冰浴;
(4)0?4℃,4000r / min离心10min;
(5)弃去上清液,加入500µll冰冷的0.1mol / L CaCl2溶液,小心悬浮细胞。 0?4℃,以4000r / min离心10min;
(6)弃去上清液,加入100µl冰冷的0.1mol / L CaCl2溶液,小心悬浮细胞。将它们放在冰上一会儿后,准备感受态细胞悬液。
(7)所制备的感受态细胞悬液可以直接进行转化实验,也可以添加约占高压灭菌甘油总体积约15%的溶液,充分混合,并分装到1.5ml离心管中,放入- 70在℃可以保存六个月至一年。
2)细胞转化
(1)取三份100µl感受态细胞悬液(如果为冷冻保存液,解冻后需立即进行操作),在第一组悬浮液中加入10µl重组质粒DNA(体积不超过10µl),此管为转化实验组。在第二组悬浮液中插入DNA片段,即消化DNA片段后将25ng 100µl感受态细胞悬浮液插入;在第三组悬浮液中分离质粒DNA,即1ng未消化的pBluescript质粒DNA十个100µl感受态细胞悬液。
(2)轻轻摇动上述样品,将其放在冰上20-30分钟,在42℃水浴中放置1-2分钟,然后在冰上快速冷却2分钟。
(3)立即在上述试管中加入0.4ml LB液体培养基(无需在冰上操作),使总体积为0.5ml。该溶液称为转化反应储备液。摇匀并在37℃摇动培养约45-60min,以恢复受体细菌的正常生长,重组转化子表达抗生素基因产物。
3)平板培养
(1)取0.1毫升每种样品培养液,将其放在含有抗生素的LB平板培养基上,并均匀铺开(如果被玻璃棒吸收,请在酒精灯燃烧后冷却下来,不要使用太多)。
(2)细菌溶液被培养基完全吸收后,将培养皿倒置,并在37摄氏度的恒温培养箱中孵育沉淀(12-16h)。当菌落生长良好且彼此不重叠时,停止培养。对于蓝白色斑点的选择对于质粒和磷脂,此时应清楚地看到蓝色和白色菌落。
通过CaCl2方法制备的感受态细胞被转化为每微克超螺旋质粒DNA 5×106-2×107个转化的菌落。在实际工作中,每微克105个以上的转化菌落就可以满足一般的克隆实验。
四、大肠杆菌感受态细胞实验注意事项:
※ 检测转化体并计算转化率、各实验组菌落的生长状况及结果分析:
⑴ 转化体总数=菌落数×(转化反应储备液总体积/包被细菌溶液的体积);⑵ 插入频率=蓝色菌落数/白色菌落数;
⑶ 转化频率=转化子总数/添加的质粒DNA数量(计算每微克的转化菌落数)。
五、大肠杆菌感受态细胞实验所需试剂清单:
序列 | 产品名 | 货号 | CAS | 备注 |
1 | 2ml圆底连盖离心 | F-EP020 | ||
2 | 10ul白吸头 | FT-10 | ||
3 | 1.5ml尖底连盖离心管 | F-EP015 | ||
4 | CaCl2 | JT0418 | 10043-52-4 | |
5 | LB培养基 | HC1007 | ||
6 | 甘油 | JT26018 | 56-81-5 |