SDS-PAGE凝胶电泳凝胶的制备方法
Release Time:2020-07-10一、实验基本介绍:
SDS-PAGE电泳可用于分离蛋白质和核苷酸。这里是对SDS-PAGE实验原理,试剂和设备以及实验程序的综述。
二.实验原理:
SDS-PAGE是一种经济,快速,可重复的定量,比较和表征蛋白质的方法。该方法基于混合蛋白质的不同分子量。
SDS是一种洗涤剂,可以与蛋白质的疏水部分结合,破坏其折叠结构,并使其广泛存在于均匀溶液中。 SDS蛋白复合物的长度与其分子量成正比。向样品介质和凝胶中加入强还原剂和去污剂后,电荷因子可以忽略不计。蛋白质亚基的迁移率取决于该亚基的分子量。
三.试剂和设备:
序号 | 名称 | 货号 | CAS | 备注 |
1 | Tris-HCl(pH6.8) | HC2104 | ||
2 | 甘油 | JT26018 | 56-81-5 | |
3 | 巯基乙醇 | SS0504 | 60-24-2 | |
4 | 溴酚蓝 | SX0029 | 115-39-9 | |
5 | 丙烯酰胺 | LSH54449 | 79-06-1 | |
6 | 甲叉双丙烯酰胺 | SF0004 | 110-26-9 | |
7 | 四乙基乙二胺 | JT10222 | 150-77-6 | |
8 | 过硫酸铵 | JT10928 | 7727-54-0 | |
9 | 甘氨酸 | SS3763 | 56-40-6 |
实验试剂:1. 5x样品缓冲液(10ml):0.6ml 1mol / L Tris-HCl(pH6.8),5ml 50%甘油,2ml 10%SDS,0.5ml巯基乙醇,1ml 1%溴酚蓝,0.9ml蒸馏水。它可以在4°C下保存数周或在-20°C下保存数月。
2.凝胶存储溶液:在通风橱中,称取30克丙烯酰胺和0.8克亚甲基双丙烯酰胺。加入蒸馏水溶解后,使体积达到100ml。过滤后,放入棕色瓶中,在4℃下保存,一般可保存1个月。
3. pH8.9分离凝胶缓冲液:Tris 36.3g,加1mol / L HCl 48ml,加蒸馏水80ml溶解,调节pH 8.9,定容至100ml,在4℃下保存。
4. pH6.7浓缩凝胶缓冲液:Tris 5.98g,加1mol / L HCl 48ml,加蒸馏水80ml溶解,调节pH 6.7,定容至100ml,在4℃下保存。
5. TEMED(四乙基乙二胺)原液
6.10%过硫酸铵(用双蒸馏水新鲜制备)
7. pH8.3 Tris-甘氨酸电极缓冲液:称取6.0g Tris,28.8g甘氨酸,加入约900ml蒸馏水,将pH值调节至8.3,然后用蒸馏水将体积调至1000ml。使用前应在4°C储存并稀释10次。
8.考马斯亮蓝G250染色液:称取100毫克考马斯亮蓝G250,将其溶于200毫升蒸馏水中,缓慢加入7.5毫升的70%高氯酸,最后加水至250毫升,搅拌1次。小时,并用小孔滤纸过滤。
设备:电泳仪,电泳槽,水浴,摇床。
四.实验操作;
1.样品制备:
在eppendorf管中将蛋白质样品与5X样品缓冲液(20ul + 5ul)混合。放入100℃加热5-10min,取上清液点样。
2.分离凝胶和浓缩凝胶的制备:
①用清洁剂清洗玻璃板,样品梳子和垫片,用ddH2O冲洗几次,然后用乙醇擦拭并干燥;
②在两块清洗过的玻璃板之间加垫片,并按照Bio-Rad MiniⅡ/Ⅲ的说明进行安装。
③根据以下体积准备8.0 ml的10%分离凝胶,并充分混合:ddH2O 3.0 ml; 1.0 mol / LTris-HCl pH = 8.8 2.1毫升; 30%Acr-Bis 2.8毫升10%SDS 80 ul; 10%AP 56 ul; TEMED 6 ul。
④将分离胶倒入玻璃板之间,立即用一层蒸馏水覆盖,约20分钟后胶会聚合;
⑤准备以下体积的3.0 ml 6%浓缩凝胶,并充分混合:ddH2O 1.0 mol / LTris-HCl pH = 6.8 30%Acr-Bis; 2.0毫升400 ul 600 ul; 10%SDS 10%AP TEMED; 36ul 24ul 4ul。
⑥从上层倒出蒸馏水,干燥滤纸,倒入浓缩胶,插入样品梳;
⑦安装电泳系统,加入电极缓冲液并加样20μl;
⑧电压稳定在200V,当溴酚蓝刚从分离凝胶中用完时,停止电泳,大约需要45分钟?1小时。
⑨取下橡胶片,将剥离胶放入染色液中,在室温下染色1至2小时;加入脱色溶液,将其以80 rpm的速度放在脱色振荡器上,然后更换脱色溶液(10 ml冰醋酸; 45 ml乙醇; 45 ml蒸馏水),直至完全除去。
聚丙烯酰胺凝胶具有分子筛作用。可以根据蛋白质亚基的不同分子量来分离蛋白质。 SDS-PAGE电泳凝胶的质量直接关系到电泳的成功。一般浓度凝胶和分离凝胶的pH分别为6.7和8.9。